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Ganoderma ?

Kairos

Jplm a écrit
PS 2 18h47 : et le polypore du dessous, tu t'y es intéressé, tu prévois de le mettre sur un autre post ?

En faisant du tri dans mes photos, je me suis aperçu que oui, je l'avais également photographié 😃

Je pense à Ganoderma applanatum

Les pores sont si petits que le dessous semble totalement lisse au toucher.

Nommo

Bonjour,
For me to.

Jplm

Bonjour,

Oui, un ganoderme, reste à compter les pores et/ou faire le test de l'ammoniaque.

Jplm

Kairos

Je peux pas faire mieux pour les pores. Comme la répartition n'est pas homogène, ça va de 3 à 5 pores au mm en fonction des endroits où on se place.

Richmond63

Pores un peu grands pour applanatum, australe ou pfeifferi iraient mieux, peut-tu faire une coupe et une sporée ?

Kairos

Richmond63 a écrit
Pores un peu grands pour applanatum, australe ou pfeifferi iraient mieux, peut-tu faire une coupe et une sporée ?

Je ne vais pas retourner au bois avant la semaine prochaine....J'aurais dû ramener le champignon avec moi pour une étude plus approfondie 😳

G.australe me plaît bien aussi....mais j'ai vu quelques photos des pores d'applanatum où la disposition des pores est très similaire. Sans parler du brunissement au toucher.

Andgelo

pfeifferi est éliminé d'emblée avec cette cuticule mate.

Très probablement adspersum mais l'ammoniaque pourrait confirmer.

Tu as le temps, ce genre de champignon se garde assez longtemps. 😜

Kairos

Je testerai ça la semaine prochaine 😃

Jplm

Bonsoir,

Si tu n'as pas d'ammoniaque, passe à la SMF (20 rue Rottembourg) demain, tu pourras en acheter une fiole. J'y serai vers 16-17h. Tu peux aussi apporter des champignons à déterminer, il y a même des spécialistes du bois de Vincennes !

Jplm

Kairos

Je travaille à Saint Cloud demain. Je rentre tard en général. Donc peu de chance que je puisse passer. Mais merci pour l'offre.

Les horaires semblent plus faits pour les retraités, ce qui n'est pas encore mon cas (même si je m'en approche à grands pas). 😃

Nommo

Bonjour Jplm,
A la séance du Lundi de la SMF il y a des spécialistes du Bois de Boulogne ? 😆 Salue pour moi Maxime Chiaffi et René Chalange si ils sont présents et Régis Courtecuisse si c’est un habitué du Lundi. Nono.

Jplm

Kairos a écrit
Les horaires semblent plus faits pour les retraités

C'est vrai de toutes les sociétés hélas et je n'y allais pas quand je travaillais. En l'occurrence c'est le lundi parce que c'est le lendemain du dimanche et c'est l'après-midi parce qu'il est rare que les bénévoles d'une association travaillent la nuit ! Certains membres qui ont une activité professionnelle arrivent tard dans l'après-midi, mais je conçois que de Saint-Cloud à la Porte Dorée, ce n'est pas faisable ; heureux les provinciaux qui n'ont pas ces temps de déplacement.

Jplm

Kairos

Je suis retourné sur le même tronc et prélevé le dernier exemplaire "présentable", tous les autres ayant viré au noir.

Mesure des pores avec une vrai règle et non pas un bout de papier avec une règle imprimée dessus.

Vu en coupe.

Il ne manque plus que la réaction à l'ammoniaque, que je posterai demain....le temps d'aller en acheter.

Jplm

Belle persévérance ! Pores pas très nets sur la photo mais semblant très fins, plus de 4 par mm, quelques galles peut-être, croûte semblant fine quoique non mesurée et aucune réaction verte à l'ammoniaque (jusqu'ici 😉 ), je mise sur applanatum.

Jplm

PS : L'ammoniaque qu'il te faut est de l'ammoniaque concentrée de laboratoire, pas celle diluée qu'on trouve en grande surface.

PS2 : Et le seul test infaillible bien sûr, c'est de regarder les spores : 6-10 x 5-6.5 μm pour applanatum contre 9-15 x 5-9.5 μm pour adspersum selon le GEPR.

Kairos

Mesurer les spores sans microscope, ça va pas être coton 😃

Jplm

Kairos a écrit
Mesurer les spores sans microscope, ça va pas être coton 😃

Allons, regarde les dimensions, les spores de G. adspersum sont si grandes qu'un jeune homme comme toi les verra à l’œil nu ; et si tu ne vois rien, c'est que c'est l'autre. Facile, la mycologie, non ?

Jplm

[Bon, les débutants, vous n'êtes pas non plus obligés de croire tout ce qui s'écrit ici].

Kairos

J'ai rechargé la vue des pores, j'espère que c'est plus net comme ça 😃 Mon appareil photo était à cours de batterie j'ai donc utilisé mon téléphone, d'où la qualité inférieure.

Richmond63

bonsoir.
Je compte toujours 4 pores par mm, ce qui conforte adspersum. Synonymisé avec australe sur MycoDb et faisant l'objet de deux taxons différents sur IF ; j'ai du mal à distinguer des différences, au secours les spécialistes.

Jplm

Bonsoir,

Ouaif, revu comme ça, on ne dépasse pas les 4 pores au mm, attendons l'ammoniaque.

Quant à la différence entre adspersum et australe, j'attends qu'on m'explique. Le GEPR n'a qu'adspersum, le RCBD le mentionne aussi (page 86), Annarosa Bernicchia ne parle que d'australe, Bon les synonymise (page 342), Index Fungorum a deux espèces distinctes...

Bonne nuit,

Jplm

Kairos

Euh, la règle est graduée en 1/2 mm. Il faut deux traits pour faire un mm, et je compte plutôt 5-6 pores par mm.

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